细胞培养常见问题及对策


1 冷冻管应如何解冻?取出冷冻管后,须立即放入 37 C 水槽中快速解冻,轻摇冷冻管使其在 1 分钟内全部融化,并注意水面不可超过冷冻管盖沿,否则易发生污染情形。另冷冻管由液氮桶中取出解冻时,必须注意安全,预防冷冻管之爆裂。2细胞冷冻管解冻培养时,是否应马上去除 DMSO?除少数特别注明对 DMSO 敏感之细胞外,绝大部分细胞株(包括悬浮性细胞),在解冻之后,应直接放入含有 10-15ml 新鲜培养基之培养角瓶中,待隔天再置换新鲜培养基以去除 DMSO 即可,如此可避免大部分解冻后细胞无法生长或贴附之问题。3可否使用与原先培养条件不同之培养基?不能。每一细胞株均有其特定使用且已适应之细胞培养基,若骤然使用和原先提供之培养条件不同之培养基,细胞大都无法立即适应,造成细胞无法存活。4可否使用与原先培养条件不同之血清种类?不能。血清是细胞培养上一个极为重要的营养来源,所以血清的种类和品质对于细胞的生长会产生极大的影响。来自不同物种的血清,在一些物质或分子的量或内容物上都有所不同,血清使用错误常会造成细胞无法存活。5何谓 FBS, FCS, CS, HS ?FBS (fetal bovine serum) 和 FCS (fetal calf serum) 是相同的意思,两者都是指胎牛血清, FCS 乃错误的使用字眼,请不要再使用。CS (calf serum) 则是指小牛血清。HS (horseserum) 则是指马血清。6培养细胞时应使用 5 %或 10%CO2?或根本没有影响?一般培养基中大都使用 HCO3-/CO32-/H+作为 pH的缓冲系统,而培养基中 NaHCO3 的含量将决定细胞培养时应使用的 CO2 浓度。当培养基中NaHCO3含量为每公升 3.7 g 时,细胞培养时应使用 10% CO2;当培养基中NaHCO3 为每公升 1.5 g 时,则应使用 5% CO2 培养细胞。7何时须更换培养基?视细胞生长密度而定,或遵照细胞株基本数据上之更换时间,按时更换培养基即可。8培养基中是否须添加抗生素?除于特殊筛选系统中外,一般正常培养状态下,培养基中不应添加任何抗生素。9附着性细胞继代时所使用之 trypsin-EDTA浓度?应如何处理?一般使用之 trypsin-EDTA浓度为 0.05% trypsin-0.53m MEDTA.4 Na。第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中,保存于–20 C,避免反复冷冻解冻造成 trypsin 之活性降低,并可减少污染之机会。10悬浮性细胞应如何继代处理?一般仅需持续加入新鲜培养基于原培养角瓶中,稀释细胞浓度即可,若培养液太多时,可将培养角瓶口端稍微抬高,直到无法容纳为止。分瓶时取出一部份含细胞之培养液至另一新的培养角瓶,加入新鲜培养基稀释至适当浓度, 重复前述步骤即可。11欲将一般动物细胞离心下来,其离心速率应为多少转速?

欲回收动物细胞,其离心速率一般为 300xg (约 1,000rpm),5- 10 分钟,过高之转速,将造成细胞死亡。12细胞之接种密度为何?依照细胞株基本数据上之接种密度或稀释分盘之比例接种即可。细胞数太少或稀释的太多亦是造成细胞无法生长之一重要原因。13细胞冷冻培养基之成份为何?动物细胞冷冻保存时最常使用的冷冻培养基是含 5- 10%DMSO (dimethylsulfoxide)和 90- 95 %原来细胞生长用之新鲜培养基均匀混合之。注意:由于DMSO 稀释时会放出大量热能,故不可将 DMSO 直接加入细胞液中,必须使用前先行配制完成。14DMSO 之等级和无菌过滤之方式为何?冷冻保存使用之 DMSO 等级,必须为 Tissue culture grade 之 DMSO (如Sigma D2650),其本身即为无菌状况,第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中,保存于 4 C,避免反复冷冻解冻造成 DMSO 之裂解而释出有害物质,并可减少污染之机会。若要过滤 DMSO,则须使用耐 DMSO 之 Nylon 材质滤膜。15冷冻保存细胞之方法?冷冻保存方法一:冷冻管置于 4 C 30~60 分钟 → (-20 C 30 分钟) → -80 C16~18 小时(或隔夜) → 氮槽 vapor phase 长期储存。冷冻保存方法二: 冷冻管置于已设定程序之可程序降温机中每分钟降 1-3 C 至–80 C 以下, 再放入液氮槽 vapor phase 长期储存。*-20 C不可超过 1 小时,以防止冰晶过大,造成细胞大量死亡,亦可跳过此步骤直接放入-80 C 冰箱中,惟存活率稍微降低一些。16细胞欲冷冻保存时,细胞冷冻管内应有多少细胞浓度?冷冻管内细胞数目一般为 1x106 cells/ml vial,融合瘤细胞则以 5x106 cells/ml vial 为宜。17应如何避免细胞污染?细胞污染的种类可分成细菌、酵母菌、霉菌、病毒和霉浆菌。主要的污染原因为无菌操作技术不当、操作室环境不佳、污染之血清和污染之细胞等。严格无菌操作技术、清洁的环境、与品质良好之细胞来源和培养基配制是减低污染的好方法。18如果细胞发生微生物污染时,应如何处理? 加入相应抗生素,直接灭菌后丢弃之。19支原体(mycoplasma) 污染的细胞, 是否能以肉眼观察出异状?不能。除极有经验之专家外,大多数遭受支原体污染的细胞株,无法以其外观分辨之。20支原体污染会对细胞培养有何影响?支原体污染几乎可影响所有细胞之生长参数,代谢及研究任一数据。故进行实验前,必须确认细胞为 mycoplasma-free,实验结果之数据方有意义。 21细胞株有支原体污染时, 该如何处理?直接灭菌后丢弃,以避免污染其它细胞株。22CO2培养箱之水盘如何保持清洁?定期(至少每两周一次) 以无菌蒸馏水或无菌去离子水更换之。

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